аспирант
Россия
сотрудник
Россия
сотрудник
Россия
сотрудник
Россия
В статье рассматривается влияние соматического экстракта Аnisakis simplex L3 на культуры клеток микроор- ганизмов in vitro. Ранее установлено, что под действием указанного экстракта нарушается и угнетается процесс деления эукариотических клеток. Сведений о механизмах взаимодействия соматических экстрактов гельминтов и микроорганизмов очень мало. Предполагается, что соматический экстракт из анизакид оказывает негативное влия- ние на микроорганизмы за счет входящих в его состав белковых компонентов и метаболитов. Целью исследования являлось изучение влияния экстракта на культуры клеток разнообразных микроорганизмов, как по морфологиче- ским признакам, так и по устойчивости к факторам внешней среды. Экстракт готовили из личинок анизакид, из- влеченных из замороженной путассу (Micromesistius poutassou), проверяли на стерильность и безвредность, опреде- ляли содержание белка. Для исследования использовали суточные культуры бактерий: микрококки Micrococcus sp., палочки Escherichia coli, Proteus vulgaris, Salmonella tiphimurium и бациллы Bacillus subtilis. При культивировании микроорганизмов с дисками, пропитанными антигенным экстрактом анизакид, в термостате при +37° С через 12 ча- сов выявлена зона задержки роста у Micrococcus sp., E. coli и P. vulgaris. На рост бактерий палочек S. tiphimurium, бацилл B. subtilis экстракт влияния не оказывал. Формирование выраженной зоны стерильности свидетельствует о наличии в составе белкового экстракта биологически-активных компонентов, обладающих бактериостатическим действием. Обсуждаются механизмы бактериостатического действия соматического экстракта.
соматический экстракт, Аnisakis simplex L3, метаболиты, бактерии, бациллы, бактериоста- тическое действие.
1. МУК 4.2.1890-04. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам: методические указания. - М. : Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004.
2. Волкова Л. В., Гришина Т. А., Волков А. Г. Низкомолекулярные катионные пептиды лейкоцитов, индуцированные различными антигенами // Вестник ПНИПУ. Химическая технология и биотехнология. 2015. № 4. С. 35-48.
3. Сивкова Т. Н. Получение и характеристика антигенов гельминтов: учебно-методическое пособие. - Пермь : Изд-во Пермской ГСХА, 2009. - 14 с.
4. Сивкова Т. Н., Бережко В. К. Кариопатическое и патоморфологическое действие продуктов метаболизма личинок анизакид: монография. - Пермь : Изд-во Пермской ГСХА, 2011. - 132 с.
5. Abner S. R., et al. Trichuris suis: detection of antibacterial activity in excretory-secretory products from adults. Exp. Parasitol. 2001. No. 99. Рp. 26-36.
6. Andersson M., Boman A., Boman H. H. Ascaris nematodes from pig and human make three antibacterial peptides: isolation of cecropin P1 and two ASABF peptides. Cell. Mol. Life Sci. 2003. No. 60. Рp. 599-606.
7. Audicana M. T., Kennedy M. W. Anisakis simplex: from obscure infectious worm to inducer of immune hypersensitivity. Clin Microbiol. Rev. 2008. No. 21. Рp. 360-379.
8. Belas R., Manos J., Suvanasuthi R. Proteus mirabilis ZapA metalloprotease degrades a broad spectrum of substrates, including antimicrobial peptides. Infect. Immun. 2004. No. 72. Рp. 5159-5167.
9. Delmar J. A., Su C. C., Yu E. W. Bacterial multidrug efflux transporters. Annu. Rev. Biophys. 2014. No. 43. Рp. 93-117.
10. Drake L., et al. The major secreted product of the whipworm, Trichuris, is a pore-forming protein. Proc. Biol. Sci. 1994. No. 257. Рp. 255-261.
11. Eberle R., et al. Isolation, identification and functional profile of excretory-secretory peptides from Onchocerca ochengi. Acta Trop. 2015. No. 142. Рp. 156-166.
12. Fæste C. K., et al. Characterisation of potential novel allergens in the fish parasite Anisakis simplex. EuPA Open Proteomics. 2014. No. 4. Рp. 140-155.
13. Fæste C. K. Fish feed as source of potentially allergenic peptides from the fish parasite Anisakis simplex (S.L.). Animal feed science and technology. Elsevier Science Publishing Company, Inc. 2015. No. 202. Рp. 52-61.
14. Haarder S., et al. Effect of ES products from Anisakis (Nematoda: Anisakidae) on experimentally induced colitis in adult zebra fish. Parasite Immunol. 2017. Vol. 39, I. 10. DOIhttps://doi.org/10.1111/pim.12456.
15. Joo H. S., Fu C. I., Otto M. Bacterial strategies of resistance to antimicrobial peptides. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2016. No. 26. 371 (1695). Pp. 1-11. DOIhttps://doi.org/10.1098/rstb.2015.0292.
16. Kato Y. Humoral defense of the nematode Ascaris suum: antibacterial, bacteriolytic and agglutinating activities in the body fluid. Zoolog. Sci. 1995. No. 12. Рp. 225-230.
17. Mehrdana F., Buchmann K. Excretory/secretory products of anisakid nematodes: biological and pathological roles. Acta Veterinaria Scandinavica. 2017. No. 59:42. Рp. 1-12. DOIhttps://doi.org/10.1186/s13028-017-0310-3.
18. Midha A., Schlosser J., Hartmann S. Reciprocal Interactions between Nematodes and Their Microbial Environments. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2017. Vol. 7:144. Рp. 1-20. DOI:https://doi.org/10.3389/fcimb.2017.00144.
19. Peschel A., et al. Staphylococcus aureus resistance to human defensins and evasion of neutrophil killing via the novel virulence factor Mpr F is based on modification of membrane lipids with L-lysine. J. Exp. Med. 2001. No. 193. Рp. 1067-1076.
20. Reynolds L. A., Finlay B. B., Maizels R. M. Cohabitation in the intestine: interactions between helminth parasites, bacterial microbiota and host immunity. Journal of immunology. 2015. 195. No. 9. Рp. 4059-4066.
21. Schmidtchen A., et al. Proteinases of common pathogenic bacteria degrade and inactivate the antibacterial peptide LL-37. Mol. Microbiol. 2002. 46. Рp. 157-168.
22. Silhavy T. J., Kahne D., Walker S. The bacterial cell envelope. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2010 2 (5):a000414. DOIhttps://doi.org/10.1101/cshperspect.a000414.
23. Shelton C. L. Sap transporter mediated import and subsequent degradation of antimicrobial peptides in Haemophilus. PLoS Pathog. 2011 7(11):e1002360. DOIhttps://doi.org/10.1371/journal.ppat.1002360.
24. Svanevik C. S., Lunestad B.T., Levsen A. Effect of Anisakis simplex (sl) larvae on the spoilage rate and shelflife of fish mince products under laboratory conditions. Food Control. 2014. No. 46. Рp. 121-126.
25. Tarr D. E. K. Distribution and characteristics of ABFs, cecropins, nemapores, and lysozymes in nematodes. Dev. Comp. Immunol. 2012. No. 36. Рp. 502-520.
26. Wardlaw A. C., Forsyth L. M., Crompton D. W. Bactericidal activity in the pig roundworm Ascaris suum. J. Appl. Bacteriol. 1994. No. 76. Рp. 36-41.
27. Zhang H., et al. In vitro antimicrobial properties of recombinant ASABF, an antimicrobial peptide isolated from the nematode Ascaris suum. Antimicrob. Agents Chemother. 2000. No. 44. Рp. 2701-2705.
