РОЛЬ ПЦР В ДИАГНОСТИКЕ ВИДОСПЕЦИФИЧНОГО ХЛАМИДИОЗА У КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
Рубрики: БИОЛОГИЯ
Аннотация и ключевые слова
Аннотация (русский):
Аннотация. Целью исследований стало изучение практического значения метода ПЦР для видовой идентификации возбудителей персистирующей хламидийной инфекции у крупного рогатого скота. Методы. Проведена ПЦР-диагностика биологического материала от коров и телят. Результаты. При лабораторных исследованиях было установлено, что в биологическом материале в 17,1 % случаев обнаружено видовое разнообразие хламидий: геномы Chlamydia spp. (7,6 %), Chlamydophila pecorum (7,6 %) и Chlamydophila abortus (1,9 %). Специфические участки ДНК бактерии Chlamydophila pecorum были обнаружены в биологическом материале у молодняка в 2,8 % случаев. У обследованных телят наблюдалась острая форма хламидийной инфекции с поражением респираторных органов, а также кератоконъюнктивиты. Геномы Chlamydophila abortus были выявлены в биоматериалах от абортировавших коров в 1,9 % случаев, что подтвердило наличие у исследуемых животных латентных и хронических форм заболеваний органов репродуктивного тракта, связанных с инфицированием хламидиями. В пробах положительных по Chlamydia spp. дополнительно была обнаружена ДНК Staphilococcus aureus в 37,5 % случаев. Научная новизна. В настоящее время ПЦР-диагностика бактерий рода Chlamydophila, обладающих уникальным циклом развития внутриклеточных паразитов, открывает новые возможности в обнаружении генетического материала хламидий определенного вида у сельскохозяйственных животных. Метод полимеразной цепной реакции показал себя как высокочувствительный и специфичный в отношении диагностики хламидофил у сельскохозяйственных животных при разных формах течения инфекционного процесса. Сложность видовой идентификации возбудителей Chlamydophila psittaci, Chlamydophila abortus и Chlamydophila picorum, которые обладают тесным генетическим родством, в настоящее время стала определяться объемом и качеством лабораторно-диагностической базы.

Ключевые слова:
крупный рогатый скот, инфекционные заболевания, хламидиоз, метод ПЦР, генетическое разнообразие, геномы, ДНК, диагностика.
Текст
Текст произведения (PDF): Читать Скачать
Список литературы

1. Шилова Е. Н., Печура Е. В., Петрова О. Г., Юров К. П. Острые респираторные вирусные болезни крупного рогатого скота // БИО. 2019. № 4 (223). С. 30-33.

2. Порываева А. П., Шилова Е. Н., Нурмиева В. Р., Устьянцев И. В. Напряженность поствакцинального иммунитета к возбудителям острых респираторных вирусных инфекций у телят // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2017. № 6 (61). С. 41-45.

3. Fernández-Aguilar X., Rossi L., Cabezón Ó., Giorgino A., Victoriano Llopis I., Frey J., López-Olvera J. R. Infectious keratoconjunctivitis and occurrence of Mycoplasma conjunctivae and Chlamydiaceae in small domestic ruminants from Central Karakoram, Pakistan // Veterinary Record. 2017. Vol. 181. Iss. 9. Article number. 237. DOI:https://doi.org/10.1136/vr.103948.

4. Безбородова Н. А., Кожуховская В. В., Петропавловский М. В., Томских О. Г. Полимеразная цепная реакция в диагностике латентных, бессимптомных и хронических форм инфекционных заболеваний крупного рогатого скота // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2019. № 4. С. 30-33. DOI:https://doi.org/10.17238/issn2072-6023.2019.4.30.

5. Кочетов В. В., Татарникова Н. А., Кочетова О. В. Морфофункциональные изменения в тканях последа при хламидийной инфекции у крупного рогатого скота // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. 2015. Т. 221. № 1. C. 121-124.

6. Shatleh-Rantisi D., Tamimi A., Ashhab Y. Improving sensitivity of single tube nested PCR to detect fastidious microorganisms. Heliyon. 2020. No. 6 (1). Article number e03246.2020. DOI:https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2020.e03246.

7. Anstey S. I., Quigley B. L., Polkinghorne A., Jelocnik M. Chlamydial infection and on-farm risk factors in dairy cattle herds in South East Queensland // Australian Veterinary Journal. 2019. Vol. 97. Iss. 12. Pp. 505-508. DOI:https://doi.org/10.1111/avj.12879.

8. Álvarez D., Caro M. R., Buendía A.J., Schnee C., Ortega N., Murcia-Belmonte A., Salinas J. Effect of female sex hormones on the developmental cycle of Chlamydia abortus compared to a penicillin-induced model of persistent infection // BMC Veterinary Research. 2019. No. 15 (1). Article number 259. DOI:https://doi.org/10.1186/s12917-019-2013-7

9. Nie F., Gong Q., Yang J., Xi C., Wang Y., Wang G., Zhang L., Li X., Huo D., Hou C. Establishment of a Multiplex Real-Time TaqMan-MGB Polymerase Chain Reaction (PCR) Method for the Simultaneous Detection of Three Animal Chlamydia Species // Medical Science Monitor. 2019. No. 25. Pp. 9369-9376. DOI:https://doi.org/10.12659/MSM.918344.

10. Szymańska-Czerwińska M., Mitura A., Niemczuk K., Zaręba K., Jodełko K., Pluta A., Scharf S., Vitek B., Aaziz R., Vorimore F., Laroucau K., Schnee C. Dissemination and genetic diversity of chlamydial agents in Polish wildfowl: Isolation and molecular characterisation of avian Chlamydia abortus strains // PLOS ONE. 2017. No. 12. Article number e0174599. DOI:https://doi.org/10.1371/journal.pone.0174599.

11. Bommana S., Polkinghorne A. Mini Review: Antimicrobial Control of Chlamydial Infections in Animals: Current Practices and Issues // Frontiers in Microbiology. 2019. No. 10. Article number 113. DOI:https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.00113

12. Opota O., Brouillet R., Greub G., Jaton K. Methods for Real-Time PCR-Based Diagnosis of Chlamydia pneumoniae, Chlamydia psittaci, and Chlamydia abortus Infections in an Opened Molecular Diagnostic Platform // Methods in Molecular Biology. 2017. No. 1616. Pp. 171-181. DOI:https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7037-7_11.

13. Шкуратова И. А., Шилова Е. Н., Соколова О. В., Ряпосова М. В. Программы контроля инфекционных факторов, влияющих на репродуктивную функцию высокопродуктивных молочных коров // Ветеринария и кормление. 2020. № 2. С. 54-57. DOI:https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2020-2-13.

14. Barati S., Moori-Bakhtiari N., Najafabadi M. G., Momtaz H., Shokuhizadeh L. The role of zoonotic chlamydial agents in ruminants abortion // Iranian Journal of Microbiology. 2017. No. 9 (5). Pp. 288-294.

15. Di Blasio A., Traversa A., Giacometti F., Chiesa F., Piva S., Decastelli L., Dondo A., Gallina S., Zoppi S. Isolation of Arcobacter species and other neglected opportunistic agents from aborted bovine and caprine fetuses. BMC Veterinary Research. 2019. No. 15 (1). Article number 257. DOI:https://doi.org/10.1186/s12917-019-2009-3.

Войти или Создать
* Забыли пароль?