Россия
Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (ИРТ) представляет значительную проблему для молочного скотоводства. В племенных предприятиях Уральского региона используются как живые, так и инактивированные вак- цины против острых респираторных вирусных инфекций, включая ИРТ. Методы серологического скрининга антител при использовании общих серологических диагностических тестов не позволяют оценить происхождение антител к возбудителю ИРТ (поствакцинные или полевой штамм вируса). Решением в дифференциации полевых и вакцинных штаммов стала возможность применения модифицированных моновакцин против ИРТ. Целью данного исследова- ния было оценить влияние вакцинации против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота маркированной вакциной на показатели воспроизводства крупного рогатого скота. Оценивали влияние маркированных вакцин на по- казатели воспроизводства крупного рогатого скота в молочном стаде с серопревалентностью к полевому штамму (gE) 95 %. Установлено, что при применении маркированных вакцин серопревалентность в стаде в течение первого года снизилась в среднем до 53 %, в течение второго года после начала вакцинации – до 14 %. Через 5 лет после введения вакцинации серопревалентность была на уровне 5 %. Одновременно оценивали показатели воспроизводства. Было установлено, что с введением вакцинации против инфекционного ринотрахеита сервис-период у коров сократился на 13 % (с 130 до 115 дней), количество задержаний последа – на 46 % (с 21,9 до 15 %), количество мертворождений – на 12,5 % (с 2,7 до 2,4 %). Количество абортов и выход телят осталось без изменений. Применение моновакцин для спец- ифической профилактики ИРТ дает возможность контролировать появление инфекционных вульвовагинитов у коров и телок в неблагополучных по инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота молочных фермах. Применение маркированной вакцины дает возможность оценить эффективность проводимой профилактики и проводить ее кон- троль на всех этапах оздоровления ферм.
инфекционный ринотрахеит, ИРТ, крупный рогатый скот, маркированная вакцина, антигены gE и gВ, иммуноферментный анализ, воспроизводство.
1. Вялых И. В., Шилова Е. Н., Порываева А. П., Томских О. Г., Кадочников Д. М. Стратегия дифференциации инфицированных и вакцинированных животных при инфекционном ринотрахеите крупного рогатого скота // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2017. № 3. С. 34-36.; EDN: https://elibrary.ru/ZHZVZV
2. Котенева С. В., Семенова О. В., Глотова Т. И., Кощаев А. Г., Родин И. А., Глотов А. Г. Частота выявления генома вируса инфекционного ринотрахеита у крупного рогатого скота при патологии воспроизводства в хозяйствах молочного направления // Ветеринария Кубани. 2017. № 5. С. 8-11.; EDN: https://elibrary.ru/ZRPRQT
3. Кузьмин В. А., Данко Ю. Ю., Фогель Л. С., Полякова О. Р., Кисиль А. С., Цыганов А. В., Пономаренко Н. П. Эффективность вакцинопрофилактики респираторных вирусных инфекций крупного рогатого скота в Северо-Западном федеральном округе Российской Федерации // Иппология и ветеринария. 2017. № 3 (25). С. 76-81.; EDN: https://elibrary.ru/ZPDDTJ
4. Нестеров А. А. Усовершенствование технологии изготовления вакцин против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота: дисс. … кандидата ветеринарных наук. Владимир: Федеральный центр охраны здоровья животных, 2015. 150 с.; EDN: https://elibrary.ru/YLGWAL
5. Пташок А. Л. Анализ результатов производственных испытаний инактивированной вакцины против инфекционного ринотрахеита и парагриппа-3 крупного рогатого скота // Ученые записки учреждения образования Витебская ордена Знак почета государственная академия ветеринарной медицины. 2017. Т. 53. № 3. С. 74-77.; EDN: https://elibrary.ru/ZQNWMB
6. Ряпосова М. В., Порываева А. П., Кадочников Д. М., Сивкова У. В. Сравнительная характеристика клинических проявлений генитальной формы инфекционного ринотрахеита у коров и нетелей в условиях специфической вакцинопрофилактики // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2017. № 3. С. 59-62.; EDN: https://elibrary.ru/ZHZWCX
7. Юров К. П., Гулюкин М. И. Контроль и пути оздоровления скота племенных хозяйств и племенных предприятий от инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи // Российская сельскохозяйственная наука. 2018. № 1. С. 59-63.; EDN: https://elibrary.ru/OVUMGB
8. Chothe S. K., Sebastian A., Thomas A., et al. Whole-genome sequence analysis reveals unique SNP profiles to distinguish vaccine and wild-type strains of bovine herpesvirus-1 (BoHV-1) // Virology. 2018. Vol. 522. Pp. 27-36.
9. Muratore E. Surveillance of Infectious Bovine Rhinotracheitis in marker-vaccinated dairy herds: Application of a recombinant gE ELISA on bulk milk samples // Vet Immunol Immunopathol. 2017. Vol. 185. Pp. 1-6.
10. Newcomer B. W., Givens D. Diagnosis and Control of Viral Diseases of Reproductive Importance Infectious Bovine Rhinotracheitis and Bovine Viral Diarrhea // Veterinary clinics of north America-Food animal practice. 2016. Vol. 32. I. 2. P. 425.
