Аннотация. Цель исследования – определить содержание основных групп биологически активных веществ в вегетативной массе 10 видов очитков в разные фазы сезонного развития. Методы. Исследовали свежесобранное сырье – вегетативные побеги следующих видов: Aizopsis aizoon (L.) Grulich, A. hybrida (L.) Grulich, A. kurilensis (Vorosch.) S. Gontch., Hylotelephium ewersii (Ledeb.) H. Ohba, Sedum acre L., S. album L., S. hispanicum L., S. reflexum L., S. rupestre L. и S. spurium M. Bieb. Использовали общепринятые методы фитохимического анализа. Содержание сухих веществ определяли высушиванием 1 г сырья до постоянной массы. Количество фенольных соединений, пектиновых веществ, общих сахаров определяли спектрофотометрически, сапонинов – весовым методом в этанольных экстрактах, рассчитывая показатели на массу абсолютно сухого сырья. Концентрацию аскорбиновой кислоты определяли в сырой массе сырья титриметрическим методом. Научная новизна. Количественное содержание сухих веществ, катехинов, флавонолов, пектиновых полисахаридов в вегетативной массе очитков определено впервые. Установлена динамика содержания основных групп вторичных метаболитов от фазы цветения к концу вегетации. Результаты. Установлено, что вегетативная масса очитков содержит сухих веществ – до 19,74 %, флавонолов – до 2,38 %, танинов – до 19,35%, сапонинов – до 22,97%, пектиновых полисахаридов – до 9,9 %, общих сахаров – до 41,55 %, аскорбиновой кислоты – до 112,8 мг%; количество катехинов не превышает 3,15 мг%. Выявлена тенденция к накоплению флавонолов, сапонинов, пектиновых веществ в фазу цветения летом, а сахаров, танинов и сухих веществ ‒ в конце вегетации осенью. Наиболее высоким содержанием основных групп биологически активных веществ отличаются виды Aizopsis, S. spurium, S. hispanicum. Полученные данные свидетельствуют о перспективах культивирования очитков как источника различных биоактивных соединений.
Sedoideae, очитки, биологически активные вещества, вегетативная масса, сезонное развитие
1. Плантариум. Растения и лишайники России и сопредельных стран: открытый онлайн атлас и определитель растений. 2007-2023 [Электронный ресурс]. URL: https://www.plantarium.ru (дата обращения: 13.01.2023).
2. Бялт А. В. Биоразнообразие, систематика и география толстянковых (Crassulaceae) в Евразии // Ботаника в современном мире: труды XIV съезда Русского ботанического общества и конференции. Махачкала, 2018. Т. 1. С. 20-23.
3. Энциклопедия декоративных садовых растений (ЭДСР) [Электронный ресурс]. URL: http://flower.onego.ru (дата обращения: 13.01.2023).
4. Matsuoka T., Tsuchiya K., Yamada S., Lundholm J. T., Okuro T. Value of Sedum species as a companion plants for nectar-producing plants depends on leaf characteristics of the Sedum // Urban Forestry & Urban Greening. 2019. Vol. 39. Pp. 35-44. DOI:https://doi.org/10.1016/j.ufug.2019.02.003.
5. Xu F., Cao S., Wang C., Wang K., Wei Y., Shao X., Wang H. Antimicrobial activity of flavonoids from Sedum aizoon L. against Aeromonas in culture medium and in frozen pork // Food Science & Nutrition. 2019. Vol. 7. Pp. 3224-3232. DOI:https://doi.org/10.1002/fsn3.1178.
6. Canli K., Bozyel M. E., Benek A., Yetgin A., Akata I., Altuner E. M. Screening of in vitro antimicrobal activity of Sedum hispanicum ethanol extract and determination of its biochemical composition // Fresenius Environmental Bulletin. 2021. Vol. 30. No. 11 A. Pp. 12614-12619.
7. Song W., Wang J., Zhai L., Ge L., Hao S., Shi L., Lian C., Chen C., Shen Z., Chen Y. A meta-analysis about the accumulation of heavy metals uptake by Sedum alfredii and Sedum plumbizincicola in contaminated soil // International Journal Phytoremediation. 2021. Vol. 24. No. 7. Pp. 744-752. DOI:https://doi.org/10.1080/15226514.2021.1970103.
8. Hassan M. H. A., Elwekeel A., Moawad A. S., Afifi N., Amin E., Amir D. E. Phytochemical constituents and biological activity of selected genera of family Crassulaceae: A review // South African Journal of Botany. 2021. Vol. 141. Pp. 383-404. DOI:https://doi.org/10.1016/j.sajb.2021.05.016.
9. Baskar V., Venkatesh R., Ramalingam S. Flavonoids (antioxidants systems) in higher plants and their response to stresses. In: Gupta D., Palma J., Corpas F. (eds). Antioxidants and antioxidant enzymes in higher plants. Springer, Cham, 2018. Pp. 253-268. DOI:https://doi.org/10.1007/978-3-319-75088-0_12.
10. Карпук В. В., Поликсенова В. Д., Шевелева О. А., Асинова М. И., Иванова А. В. Слизи, флавоноиды, танниды в листьях суккулентов: содержание и локализация // Актуальные проблемы изучения и сохранения фито- и микобиоты: материалы III международной научно-практической конференции. Минск, 2020. С. 41-45.
11. Wang T. Y., Li Q., Bi K. S. Bioactive flavonoids in medicinal plants: Structure, activity and biological fate // Asian Journal of Pharmaceutical Sciences. 2018. Vol. 13. No. 1. Pp. 12-23. DOI:https://doi.org/10.1016/j.ajps.2017.08.004.
12. Koźmińska A., Al Hassan M., Wiszniewska A., Hanus-Fajerska E., Boscaiu M., Vicente O. Responses of succulents to drought: Comparative analysis of four Sedum (Crassulaceae) species // Scientia Horticulturae. 2019. Vol. 243. Pp. 235-242. DOI:https://doi.org/10.1016/j.scienta.2018.08.028.
13. Смусева С. О., Мироненко Н. В., Чиглакова А. О., Селеменев В. Ф. Тенденции и перспективы научных исследований в области извлечения, анализа и применения гликозидных соединений пентациклического и тетрациклического ряда (обзор) // Вестник ВГУ. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2020. № 1. С. 18-28.
14. Minzanova S. T., Mironov V. F., Arkhipova D. M., Khabibulina A. V., Mironova L. G., Zakirova Yu. M., Milyakov V. A. Biological activity and pharmacological application of pectic polysaccharides: A review // Polymers. 2018. Vol. 10 (12). Article number 1407. DOI:https://doi.org/10.3390/polym10121407.
15. Oliveira A. F., da Luz B. B., Werner M. F. P., Iacomini M., Cordeiro L. M. C., Cipriani T. R. Gastroprotective activity of a pectic polysaccharide fraction obtained from infusion of Sedum dendroideum leaves // Phytomedicine. 2018. Vol. 41. No. 1. Pp. 7-12. DOI:https://doi.org/10.1016/j.phymed.2018.01.015.
